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Les services de diagnostic des mammites de Suisselab SA permettent une identification fiable des agents pathogènes, ainsi qu’un test de résistance précis comme base pour des traitements ciblés. L’offre comprend le test PCR C16, la PCR pour Staphylococcus aureus génotype B ainsi qu’un examen bactériologique avec antibiogramme. Un spectromètre de masse MALDI-TOF, la méthode la plus rapide et la plus précise à l’heure actuelle, est utilisé pour l’analyse bactériologique.
Test PCR C16
Le test PCR C16 permet une détection rapide, sensible et précise des principaux agents pathogènes responsables de mammites. Grâce à l’utilisation de la technique de PCR quantitative en temps réel, les agents pathogènes détectés peuvent être quantifiés et indiqués dans des classes semi-quantitatives. Les résultats sont généralement disponibles le jour de la réception de l’échantillon.
Le test MID C16 convient à l’identification des agents pathogènes en cas de mammite aiguë ou subclinique, au contrôle du succès du traitement ainsi qu’au dépistage général des animaux (achat, alpage, tarissement, etc.). Le test PCR C16 est particulièrement adapté à la détection ou à l’exclusion du Staphylococcus aureus et des mycoplasmes.
Analyse bactériologique avec antibiogramme
Lors de l’analyse bactériologique, les agents pathogènes isolés en culture sont identifiés par spectrométrie de masse MALDI-TOF. Sur demande, un antibiogramme est réalisé par microdilution. La sensibilité des bactéries aux antibiotiques couramment utilisés en médecine des animaux de rente est alors vérifiée.
L’analyse bactériologique convient à l’identification des agents pathogènes en cas de mammite aiguë ou subclinique, ainsi qu’au contrôle du succès du traitement. L’antibiogramme permet au vétérinaire de trouver un traitement ciblé pour chaque germe, ce qui permet de prévenir l’apparition et la propagation des résistances aux antibiotiques.
PCR pour Staphylococcus aureus génotype B (GTB)
La PCR, réalisée après l’enrichissement des bactéries en culture liquide, comprend des réactions permettant de détecter le génotype B, particulièrement contagieux, ainsi que Staphylococcus aureus en général. Cette combinaison permet de distinguer les infections à Staphylococcus aureus GTB de celles à Staphylococcus aureus non-GTB. Grâce à l’enrichissement préalable, cette analyse est très sensible et convient non seulement à l’examen d’échantillons individuels, mais aussi à celui d’échantillons groupés et de lait de citerne. La PCR après enrichissement est la méthode de choix pour la détection de Staphylococcus aureus lors de l’achat d’animaux, avant l’alpage ou lors de l’assainissement des exploitations.
Vos avantages
- Identification fiable des agents pathogènes par PCR (PathoProof C16) ou analyse bactériologique (MALDI-TOF)
- Détection ultra-sensible de Staphylococcus aureus, y compris l’identification du génotype B, particulièrement contagieux
- Test de résistance précis au moyen du procédé de microdilution (VITEK)
- Les résultats offrent une base fiable pour des mesures et des thérapies ciblées
- Disponibilité rapide des rapports d’analyse : En règle générale, l’identification des agents pathogènes est disponible le jour de la réception de l’échantillon (PCR C16) ou le lendemain (examen bactériologique, PCR GTB). Pour l’antibiogramme il faut compter une journée supplémentaire.
- Rapport qualité-prix attractif
Méthodes
PCR C16
Le test PathoProof C16 de la société Thermo Fisher Scientific est basé sur la réaction en chaîne par polymérase (en anglais : Polymerase Chain Reaction, PCR), qui permet de détecter directement le patrimoine génétique (l’ADN) des agents pathogènes. Lors de l’analyse PCR, les germes ne doivent pas être multipliés, c’est pourquoi le test peut également être effectué avec du lait conservé ou du lait d’animaux ayant subi un traitement antibiotique préalable.
PCR GTB
Les méthodes de qPCR publiées pour la détection de Staphylococcus aureus (Graber et al., Journal of Dairy Science, 2007) et de Staphylococcus aureus génotype B (Sartori et al., Journal of Dairy Science, 2017) ont été regroupées dans une qPCR multiplex (publication en préparation). L’enrichissement des bactéries issues des échantillons de lait en culture liquide s’effectue selon une méthode publiée (Sartori et al., Journal of Dairy Science, 2017). Afin que les bactéries puissent se multiplier dans la culture liquide, les échantillons de lait ne doivent pas être conservés.
Analyse bactériologique
Les échantillons de lait sont cultivés sur un milieu nutritif non sélectif en conditions aérobies, et en cas de suspicion d’anaérobies, également en conditions anaérobies. Les colonies de bactéries ou de levures qui se sont développées sont identifiées par spectrométrie de masse MALDI-TOF (Bruker MALDI Biotyper sirius one). Les protothèques sont identifiées à l’aide des résultats microscopiques d’une coloration de Gram.
Antibiogramme
Le test de résistance chez Suisselab SA comprend la détermination des concentrations minimales inhibitrices (CMI) par microdilution sur un système VITEK 2 (Biomérieux) et l’interprétation des CMI à l’aide de directives établies (EUCAST, CLSI). Les substances actives couramment utilisées en médecine des animaux de rente sont testées. L’antibiogramme ne peut être réalisé qu’à la suite de l’examen bactériologique, car l’identité de l’agent pathogène est une condition préalable à l’interprétation correcte de l’antibiogramme.
Résultat
Dans le rapport de test de la PCR C16 et de l’examen bactériologique, les agents pathogènes trouvés dans l’échantillon sont mentionnés avec une indication semi-quantitative. Dans le cadre du test PCR GTB, un résultat est indiqué pour chaque échantillon concernant le Staphylococcus aureus GTB et le Staphylococcus aureus (négatif, douteux ou positif). Pour l’antibiogramme, le germe testé et les antibiotiques testés sont listés avec leur CMI et l’interprétation correspondante (sensible, intermédiaire, résistant). L’interprétation du rapport de test doit être faite en collaboration avec le vétérinaire du troupeau. Sur demande, Suisselab SA envoie une copie du rapport de contrôle directement à votre vétérinaire. Comme le vétérinaire doit interpréter l’antibiogramme pour le traitement, celui-ci n’est effectué que si le vétérinaire traitant est indiqué sur le formulaire de commande.
Pour une pertinence optimale de l’analyse MID, il est important d’éviter toute contamination de l’échantillon de lait par des germes étrangers provenant de l’environnement ou du lait d’autres animaux. Le prélèvement de l’échantillon de lait doit donc se faire dans des conditions aseptiques/stériles et sans contamination. Veuillez consulter nos instructions sur l’échantillonnage aseptisé pour l’identification des mammites MID.
Prix
Paramètre analysé : PCR C16
Prix : CHF 33.–/analyse
Paramètre analysé : PCR GTB
Prix : CHF 40.–/analyse
Paramètre analysé : Analyse bactériologique
Prix : CHF 19.–/analyse
Paramètre analysé : Antibiogramme
Prix : CHF 21.–/analyse
Conditions
Le matériel d’échantillonnage, l’analyse et la transmission du résultat sont compris dans le prix.
Liste des prix 2026
Suisselab conditions générales
Demande d’analyse identification des mammites MID
Demande d'analyse MID
Instruction pour l’échantillonnage aseptisé pour l’identification des mammites MID
Instruction d’échantillonnage MID
Aide à l’interprétation de l’identification des mammites MID
Aide à l’interprétation MID
Information spécialisée PathoProof PCR Assays de Thermo Fisher Scientific
Information spécialisée PathoProof PCR Assays
Combien d’analyses MID PCR sont nécessaires pour prouver l’absence de Staph. aureus ?
Pour la détection des agents pathogènes par un test de culture, il est recommandé d’analyser 3 échantillons en l’espace de 10 jours. L’animal peut uniquement être considéré comme négatif, si les 3 échantillons sont négatifs. Pour l’identification PCR 2 analyses négatives en l’espace de 15 à 30 jours sont considérée comme suffisante pour prouver l’absence de Staph. aureus. En cas d’assainissement d’une exploitation touchée par Staph. aureus, le groupe des animaux négatifs devrait néanmoins être analysé mensuellement par un échantillon poolé quant à la présence de Staph. aureus.
Combien d’échantillons d’animaux individuels peuvent être analysés dans un échantillon poolé pour déterminer la présence de Staph. aureus dans le troupeau ?
La sensibilité est la plus élevée si chaque animal est analysé individuellement. Pour économiser des coûts, les animaux peuvent néanmoins aussi être analysés en groupe (pool). Les animaux faisant partie de ce pool ne doivent être analysés qu’en cas de résultat positif de l’échantillon de groupe. Plus ce dernier est grand, plus la sensibilité de la détection de l’agent pathogène est basse. Nous recommandons des pools comprenant au maximum 10 animaux.
Quel est le délai d’attente après un traitement antibiotique jusqu’à ce que le succès du traitement puisse être contrôlé avec une analyse PCR ?
Pour les mammites provoquées par des germes problématiques (Staph. aureus, Strept. uberis), le succès du traitement devrait être contrôlé par l’analyse d’un échantillon de lait 2 à 3 semaines après la fin du traitement. Vu sa sensibilité élevée, la méthode PCR doit être privilégiée pour Staph. aureus.
Le set d’échantillonnage est envoyé gratuitement. Les coûts de matériel et de logistique sont compris dans le prix de l’analyse.
Demande d’analyse identification des mammites MID
Demande d'analyse MID
Conseils
Daniel Glauser
Dr. med. vet. FVH, Ph.D.
Responsable du laboratoire de diagnostic vétérinaire
031 919 33 22
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